树上的花十分多，散发出淡淡的清香，令我在疲倦的时候解除疲劳，仿佛坠入花海，进入彩色的梦里，让我流连忘返。花在生活中扮演了很重要的角色，花它可以让我们的心情顿时高兴起来！活到老，学到老，种植花草的过程也如是，我们需要掌握哪些知识呢？为满足您的需求，鲜之花网小编特地编辑了“萱草品种与组织快繁技术”，供大家参考，希望能帮助到有需要的朋友。
萱草;组织培养;扦插;养殖技术;栽培技术主要内容:2008年1月14日，国家林业局948项目管理办公室在北京主持召开了948项目验收会，对抗旱、抗寒低矮型针叶树朝鲜冷杉和开花地被植物萱草等优良种质及栽培技术引进（2002-08（2））项目进行了验收。
1、引进萱草品种14个，景天品种6个及相关的栽培技术，完成了项目规定的引进内容。
2、筛选出4个适应性强、观赏性状优良的萱草品种'LittleGrapette'和'ChicagoFire'，景天品种'AutumnJoy'和'StarDust'。
3、建立了萱草的分株和组培快繁技术体系以及景天的分株、扦插及组织培养等养殖技术体系，建立了配套的田间栽培技术体系，编制了萱草和景天的栽培技术规程（初稿）。
4、在北京和烟台建立了4个品种繁育圃共12亩，共繁育种苗28万多株，完成了规定面积的繁育圃的建设。
5、项目在北京植物园、北京大兴区青云店、北京市科委可持续发展促进中心及中国农科院建立了4处萱草和景天的园林应用示范点，完成了合同规定的示范任务。
推广情况:萱草品种H.'ChristmasIs'和'LittleMissy'在北京等地区的引种观察，发现其具有较强的适应性，较强的抗旱和耐寒性，且形状表现稳定，在我国三北地区以及亚热带北部地区具有良好的推广应用前景。因此，该组培快繁的技术体系也必定具有良好的推广应用前景。
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植物科隆快繁技术
专家您好：我在网上看到植物科隆快繁技术，不知道它是不是一个很成功的技术，在林业的应用是否已经成熟？望给予解答为盼。谢谢
姓名：王女士 单位：个人 联系电话： 2008-03-03
专家解答
王女士： 您好，植物克隆技术仅用植物的“一叶一芽”类似试管组织培养茎段，茎尖的微型材料，通过克隆速生液对材料切口周围的组织细胞处理后，直接接种在辅助有简易条件下的大田沙床上，让其生根发芽，一次性成苗。多数植物经4-11天生根，获得完整再生植株。经15-35天炼苗即可出圃。无论南、北方一年四季可用此法快繁。多数品种约30-50天养殖一代，一年可养殖6-12代。生长较慢的植物每年可从1个外植体扩繁几万至几十万株纯种苗,生长较快的植物可扩繁上百万仍至千万株纯种苗。每代在原种植物基数上按几何级数增殖，其养殖速度惊人！ 植物克隆技术同时对现代生物技术中植物试管快繁和人类历史上应用了近二千年的常规育苗技术具有双重重大突破。该技术将植物组织培养试管快繁从实验室解放出来走向田间，克服了植物组织培养和常规育苗技术的全部缺点。可适用于绝大多数曾用植物组培茎尖快繁和常规扦插育苗技术可养殖的植物，或上述两项技术均不适于养殖的植物；可用于植物育种工作中固定杂种优势；可用于特种转基因植物、新种质材料或濒危经济植物的快繁推广和保护；可用于自然突变植株、优良单株及多倍体优势株无性系的选择纯化和大量生产利用；可用于无病毒原种苗的隔离扩繁；可用于国内外新品种引种扩繁等等。 以上内容，仅供参考。
垂榆快繁技术
垂榆是一种较流行的园林风景树，为实现快速垂榆繁育，笔者结合自己多年实际工作经验，总结出一种简单易行的方法，现介绍如下：
一、选取砧木。砧木选取华北地区广为栽培的白榆树种，要求生长健壮，干形良好，三至六年生的大苗。在春季发芽前，按照要求高度约2至2.5米截去树头，横截面直径以2至5厘米为佳。
二、嫁接。
1.接穗要选一年生壮枝，芽要饱满，嫁接前现采集的或经过冬藏的都可以。
2.嫁接选用枝接法，具体操作时可用劈接法或插皮接法，但以劈接为佳。接穗带2至3个芽，在基部用利刀削成2至2.5厘米长的平滑斜面，再用利刀将砧木轻轻劈开；嵌入接穗，形成层对齐，接穗斜面高出砧木截面0.2厘米。若用插皮接法，接穗下部斜面要削成一面为2至2.5厘米的长斜面，一面为0.5厘米长的短斜面，然后用刀挑开砧木皮层。骨对骨插入接穗，要求接穗斜面露白o.2厘米，以利于成活。接好后用塑料膜将接口及砧木横截面包严包紧，然后套上塑料袋。根据砧木粗细，每棵树可接1至4个接穗。
3.接后15天检查，成活者可将砧木萌芽全部抹去，不成活者抹去弱芽，保留三五个壮芽，待下次补接，成活苗一个月后解除包扎物，解除时一定选取阴天时或晴天的傍晚，否则易造成刚放出来的嫩芽不适应外面的干热气候而死亡。当接穗上的芽长至30厘米长后，就要开始有选择地绑支撑物，防止大风刮掉接穗。
三、管理。嫁接苗要加强肥水的供应，促使其早发芽，发壮芽，注意修剪，抹去砧木上发出的原白榆芽，调整树枝的伸展方向，使冠形端正，不出现偏头。
四、整形。垂榆一船都要求整理成伞状。嫁接成活当年，在同一水平面上从不同方向选留3至5个主枝，在新梢尚未木质化时，向外水平绑缚，新梢长到80至100厘米时进行掐心，促发新梢。冬季修剪，主枝基部粗2厘米以上者，可保留80厘米短截，2厘米以下者可保留60厘米短截。防止偏冠。第二年每一主枝上选留2至3个延长枝向外延伸生长，可从新梢弯处截去，促进新梢生长，而后同样进行修剪，扩大树冠，同时要及时剪除内膛的下垂及高出伞顶的枝条。经过三四年培养，垂榆便可以出圃了。
重瓣黄刺玫快繁技术
一般是在夏季高温期进行，重辫黄刺玫最好在6月下旬到7月中旬采集嫩枝条，运用快繁智能控制系统控制温度、湿度。基质使用易于通气保湿的材料，如河沙、锤石、珍珠岩等。为了提高离体材料的生根率，用植物生长调节剂处理切口。要把好快繁材料质量、基质消毒关，在离体材料生根期协调好温度、湿度，生根后掌握住移苗管理关键技术，规模生产的重瓣黄刺玫苗木成活率可达85％―90％。采用嫩枝快繁育苗技术可以快速培育出大量根系发达、成活率高的重瓣黄刺玫苗木：具体做法如下：
快繁智能系统的安装与使用，于光照充足处，建立苗床，并安装好系统，铺上珍珠岩或河沙基质，经消毒后待用。
材料的采集与处理：选取1―2年生幼树上的粗壮枝、半木质枝条；或树令较大，但生长较旺盛的母树基部当年生半木质化萌生条。去掉梢部较嫩部分、截成15厘米左右的带叶枝段。每个材料剪掉下部的复叶，只留上部2枚复叶，下剪口为马耳形。选用ABT生根粉、吲哚已酸、吲哚丁酸都可以有效地促进生根。处理浓度50―200PPm，浸泡材料基部48小时：
快繁与管理：把经过处理的材料按3x3厘米的株行距插入苗床中、深度3―5厘米。插完后立即开启智能系统，湿度保持在85％以上，气温控制在35度以下，还要防止离体材料霉烂，经常喷酒灭菌剂。持续高温天加盖蔗阳网，透光率在70％―80％，效果更佳。。生根后应适当喷施氮肥和磷肥，例如浓度为0.1％的尿素与磷酸二氢钾溶液，对根系生长很有利。待大部分的根系由白色变为棕红色时，这些根可以正常地发挥吸收水分和养分的作用了，即可移入大田、这个时间大约为繁后40天左右。
移苗及大田管理：重瓣黄刺玫是阳性树种，喜光、耐旱、抗性强。但是，对于生根不久的小苗，夏末秋初气温高，移入大田时管理跟不上，就会前功尽齐。重辫黄刺玫移苗管理技术要把握两个关键：第一移苗时根系不能大嫩，没有木质化，移苗会严重伤根、成活率大大降低，所以，把握移苗时机很重要。第二给予遮阴蔽护并适当喷水，当苗木适应一周到10天、可以去除蔗阴物，按常规管理。冬季上冻时给小苗打冻水。另外，视苗木情况培土保护，以防止冬春季枯干。
非洲菊的快繁技术
非洲菊(Gerberajamesonii),为菊科,扶郎花属多年生常绿草本植物,又称“扶郎花”,为世界著名切花。原产于南非,性喜温暖,适于温室栽培。环境条件适宜可终年开花[1]。传统以种子、分株和扦插繁殖,繁殖速度慢,无法为商业化生产提供大批量优质种苗。利用组织培养方法,可获得大量品质一致的植株,且其生产不受季节影响,可周年供应。
1 材料与方法
从非洲菊黑心品种中,选健壮开花植株,取未展开的、直径约1cm大小的花蕾,带花梗切下。用纱布蘸洗涤剂水溶液擦洗后,在流水下冲洗干净。在超净台上用75%酒精浸泡15s,取出,放入0.1%升汞溶液中消毒8～10min,再用无菌水冲洗5～7次,无菌滤纸吸干表面水份,剥去苞片和舌状花瓣,留下花托,切成4块,以MS为基本培养基,附加如下不同激素(浓度单位为mg/L):诱导培养基为MS+BA5～8+IAA0.1～0.5。增殖培养基1BA1+NAA0.5; 2BA1+NAA0.3; 3BA1+NAA0.1; 4BA0.8+NAA0.1; 5BA0.5+NAA0.1。生根培养基11/2MS+IBA0.1+NAA0.05; 21/2MS+IBA0.3+NAA0.05; 31/2MS+IBA0.5+NAA0.05; 41/2MS+IBA1.0+NAA0.05。琼脂含量为0.7%,糖浓度3%,生根培养基糖浓度减半。培养温度25±2℃,每天光照12～14h,光照度1500～2000lux。
2 结果与分析
2.1 愈伤组织的诱导
在诱导培养基上,接种一周后花托开始膨大,未拔干净的小花体积增大、伸长,继续培养,有愈伤组织产生。一个月后,愈伤组织生长并分化出小芽,进而形成丛芽。将未分化的愈伤组织切成小块,分别移到新鲜的培养基上,每30d转瓶1次。部分愈伤组织能继续生长并获得小芽,其余的则只见愈伤组织增殖或变褐死亡,继代几次后,愈伤组织有玻璃化现象产生。
2.2 芽的增殖
及时将带有芽的愈伤组织转瓶。切去愈伤组织,以单芽繁殖,增殖周期为25～30d。在5种增殖培养基中均能形成丛生芽,同时,芽基部形成少量愈伤组织。增殖结果:按处理号顺序,5种培养基平均每个芽的增殖芽数分别为9.5、9.9、13.5、10.9、10.1个。增殖培养基以MS+BA1.0+NAA0.1组合最好。说明当细胞分裂素(BA)/生长素(NAA)的比值大时,促进芽的增殖[2],连续继代,结果相同。
2.3 芽的生根
把高2～3cm的芽单芽切下,接种在生根培养基中,结果4种培养基的生根率都为100%(表1),同时芽继续生长、叶面积增大,平均苗高可达5cm以上。10～15d可搬出炼苗、移栽。
将炼苗后的瓶苗进行清洗。把生根好的小苗从瓶中取出,轻轻洗净根部的培养基,注意不要伤根。用800倍甲基托布津(或多菌灵)浸泡10min后捞出,以1∶1的泥炭土和珍珠岩为介质(介质要先洒水,保持一定水份)进行假植,第一次浇好透水,加盖薄膜保湿,遮阳网遮荫,注意通风,1周后开始喷杀菌剂,每隔3d喷1次。10d后,新根发出可去盖膜,适当增加光照,进行喷雾保湿,以基质不积水为准。15d后,可结合喷药每周施叶面肥1次。苗的成活率可达95%以上。
3 讨论
在试验中,用白砂糖替代蔗糖,苗的生长势仍很强,苗质不受影响,这在大批量生产中可大大降低成本。试验过程中,固定NAA0.1mg/L,用BA2mg/L(含BA2mg/L)以上的浓度进行增殖试验,发现组培苗的增殖系数呈下降趋势,且出现玻璃化现象,BA浓度愈高,增殖系数愈小,玻璃化愈严重。可见,超过一定量浓度的BA对苗的生长起抑制作用。从生根试验中可看出,在试验激素浓度范围内,都能达到较好的生根结果。可见,非洲菊组培苗的生根较容易,对激素浓度适宜范围较宽。通过本试验,筛选出非洲菊花托组织培养各阶段最适培养基,可
工厂化生产非洲菊种苗提供参考依据。
植物非试管高效快繁技术
植物非试管高效快繁技术居国际领先水平。用途广泛，推广应用范围极大，一个植物品种的快繁成功，就可推动或促进一个产业的快速发展。自发明以来，已经在200余种经济植物的开发和应用中得到验证，它的综合快繁效率已达到或超过植物组织培养快繁技术，并显示出对多种植物无性繁殖具有普遍意义。目前已推广生产各种无性系植物1000多万株，应用生产25000多亩，有许多品种已大规模生产推广十一年.通过该技术入股已在全国各大区创建联营公司达20家.有力地促进了全国各地农林．园艺产业化的发展，在经济建设中显示出了巨大的潜力。因此，此项技术被誉为"复制绿色"的伟大创举。其技术特点为：
①、用一叶一芽植物外植体为繁殖单位材料，完全离开实验室组织培养设备条件下直接接种在大田沙床或营养袋中，一次成苗直至供应生产，对大多数植物不需任何移动，成活率高。
②、无论南方北方一年四季都可用此法快繁，多数品种一年可繁殖6-12代。一年中任何时间都可用此快繁技术启动生产。拓展了技术应用的时间和空间。
③、普及率高。普通劳动力每天（8小时）可接种5000个单位材料，适应性极广，易于推广，个人操作速度比组织培养快繁和常规育苗均快。（超过组培试管快繁接种速度好几倍，超过常规育苗操作速度），极大地节约了人工开支和提高了劳动效率。
④、每个经过培训合格的技术骨干每月可生产管理3-5万株苗木,每人每年至少可生产30 万株幼苗，以每株苗1元计，每人可创年产值高达30万元，经济效益极高。
⑤、多数植物培养4-11天即可获得完整再生植株，利用植物非试管高效快繁技术培养的第二代以后再生植株率达90%以上，真正实现了高效快繁。
⑥、对多数植物每一再生植株每30-60天繁殖一代，每代增殖系数为2-15倍（在原种植物数量基数上按几何级数高效增殖。这一点更像组织培养试管快繁的优点）。
⑦、技术步骤少，所用时间短。从微型材料开始繁殖,可直接一次性培育出在自然条件下生长的植株，对多数植物仅需要15-30天，而且植株均表现开花结果早，丰产性好。
⑧、此法培养的成熟种苗，纯度高、根系发达完整、根长25厘米以上，根数在3-6根，成熟芽饱满，茎高20-60厘米，定植生产大田成活率90%以上。
大叶黄杨扦插快繁技术
大叶黄杨四季常青，适应性强，极耐修剪，是良好的绿篱材料，易造型且抗污染，是北方城市绿化不可缺少的常绿树种之一。其育苗快繁技术尤为重要，快繁以扦插为主，进行嫩枝扦插，成活率达96%以上。
1.育苗设施及插床用砖、水泥砌成约高20厘米、宽1米的苗床，内铺18厘米厚的基质，基质下层为5～8厘米厚的粗砂，上层为细砂。在距床面50厘米高处架设水管，管上每隔1.5米安装离心或四体喷头一只，用于喷雾。扦插前，苗床用0.3%的高锰酸钾溶液消毒。
2.材料采集和处理在优良的大叶黄杨幼龄母株上剪取树冠中上部、无病虫害、生长健壮的一年生半木质化或完全木质化枝条。枝条采下后立即洒水以防失水萎蔫。插穗采集最好与修剪结合进行，随采随用将剪取的枝条截成长10～15厘米的穗段，每一插穗不少于2～3个芽，去掉基部叶片，保留上部1～2个叶片，插穗的上切口位于芽上0.5～1厘米处平剪，下切口位于节下或叶柄下0.5厘米处斜剪，剪口要平滑，无伤芽，无裂痕，皮部无损伤。插穗剪好后按粗细分级捆扎，及时处理或直接扦插。插穗基部可用ABT生根粉溶液速蘸5～10秒，促使愈合生根。
3.扦插及插床管理大叶黄杨一年四季都可以进行扦插。春、夏、秋三季扦插需要搭建小拱棚，夏季扦插还应在小拱棚之上搭建遮阴棚室。3月上旬扦插的，可在当年移栽。9月下旬～10月下旬扦插的，在第二年春土壤解冻后提早移栽。
插穗随剪随用，插前可在禁乙酸溶液中速蘸，也可直接扦插。扦插深度为插条的2/3，扦插密度为600～700株/平方米。扦插完用800～1000倍多菌灵溶液喷透基质消毒。苗床插满后要立即喷雾，睛天每天上午和下午分别喷雾两次，中午每隔半小时喷一次，每次5～10分钟，炎热夏季要视情况增加喷雾次数，以降低温度。插后一周，便可产生愈伤组织，20天左右，90%生出新根。发根后，要注意减少喷雾次数及时间，以防引起烂根;并要加喷0.2%～0.3%的尿素或复合肥料，进行根外追肥，以促使扦插苗健壮生长。
4.炼苗扦插15～20天后开始生根，至插穗形成较完整、丰满的根系后开始炼苗，逐日减少喷水次数，增加通风次数。10～15天后逐渐撤除塑料棚膜，再经10～15天逐渐撤除遮阴网，进行全光炼苗。幼苗继续留床培养20天以上，即可移苗定植。移栽时，要尽量保持根系完整，随栽随浇水，以保证移栽成活。用此法一年可扦插繁殖大叶黄杨苗3次，大大缩短了育苗周期，并提高了苗木质量。
另外，床面杂草丛生时要及时拔去。土壤过分板结时，可用小铲子轻轻在行间空隙处松土，但不易过深，以免插穗基部受伤，影响根系生长。
兰花组培快繁技术概叙
兰花的繁殖一般可通过分株进行，但繁殖系数低，现在洋兰的商业化生产都是通过试管育苗进行生产，一般可分为种子播种生产实生苗和组织培养生产分生苗两种，各有千秋，下面就其生产流程和应 用进行一些说明：
一、兰花的种子播种： 兰花的果实俗称兰荪，其中有数千到数百万粒种子，因种类不同而异，兰科植物种子的发育较特殊，种子成熟后没有胚乳，需与某些真菌共生，由真菌提供营养才能萌发，在自然条件下，萌发率很低。早期通过人工接种真菌，可以使兰花种子萌发，但技术烦琐，难度较大，后来发现在人工培养基上，不需真菌共生，如果营养成分合适，兰花种子也能萌发生长，一般常用的培养基有KC，VW和京都等，其中京都配方采用花宝花肥为主要的无机成分，配制方便，较适合兰花发烧友使用。 兰花的种子培养是进行兰花杂交育种的必要手段，也是兰花种苗生产的重要技术，如国内目前的蝴蝶兰种苗生产，多数是实生苗，与分生苗相比，实生苗往往不能保证性状的完全一致，因此对亲本的要求就非常高，好的亲本其后代的分离不会很大，好花率可达80%以上。实生苗的生产相对简单，迅捷，以蝴蝶兰为例，由一个好的荚果，播种后两个月左右可产生数万个小原球茎，经过一次分瓶后，就可进行育苗，大约3个月后得到大量可移栽的试管苗。
二、组织培养： 自MORAL于上世纪60年代首次成功进行了兰花的组织培养，目前已有数十个属的兰花进行了组织培养，通过组织培养及克隆技术进行生产的种苗具有与母本完全一致的性状。 热带兰花的组培快繁一般通过诱导产生类原球茎（PLB），通过PLB增殖进行；其起始材料以茎尖分生组织最佳，花梗上的休眠腋芽也是最常用的材料之一， 一些单轴生长的兰花如蝴蝶兰，如取茎尖，往往会失去母株，取花梗就没有这样的担心。
在植物的组织培养过程中常常会发生体细胞无性系变异，这可以做一种育种手段，但对于商业生产而言却是不利的，所以通过PLB增殖时要十分注意去除形态不正常的组织。目前台湾的蝴蝶兰分生苗生产部分采用丛生芽的方法生产， 即通过花梗诱导腋芽生成小芽，通过小芽诱导丛生芽并不断切割增殖，这样生产的种苗基本可以保证与母株性状 的一致。但生产成本高，周期特长，往往需要拥有一定数量的母株来采取花梗。 其实就兰花商品生产而言，通过PLB进行增殖生产分生苗是最有效率的，通过控制，其变异率可以降到非常低的，可以忽略不计的水平。另外幼嫩的花梗也是一种很好的起始材料，可以诱导PLB或不定芽。 国兰的组织培养近年有了很大的发展，春兰、墨兰和建兰等传统名兰都可以进行克隆了，这类地生兰的组培与热带兰不同，是通过诱导产生根状茎，通过根状茎进行增殖，在根状茎前端生成小苗。也有愈伤组织诱 导的报道，但都要通过根状茎的发生阶段。
几种珍贵荷花品种组织培养技术
荷花(Ｎｅｌｕｍｂｏｎｕｃｉｆｅｒａ)为睡莲科莲属的宿根水生花卉,是中国的传统名花和重要的经济植物。我国荷花品种资源十分丰富,由于花莲多为自然杂交或人工杂交品种,播种繁殖难以保持原品种性状,再者花莲中的许多品种常因雌雄蕊瓣化而不易结实,因此,资源圃荷花品种传统的繁殖及保存方法主要采用分藕和大面积缸栽或池植[1]。但是,荷花的分藕繁殖系数较低,这个问题现已成为限制荷花种植业发展的主要障碍[2,3]。此外,有些品种因生长势弱,品种保存十分困难。为了能充分利用品种资源,及时为商业化生产提供大量优良种苗,同时又能为珍贵品种的保存开辟新途径,我们对一些珍贵荷花品种进行了组织培养试验,筛选出较为合适的培养基,并获得了大量荷花组培苗,现将试验结果报道如下。
1 材料与方法
1 1 供试材料
试材取自杭州市园文局灵隐管理处曲院风荷水生植物资源圃,包括厦门碗莲、白玉、佛手观音、佛座和贵妃等5个珍贵品种。
1 2 外植体处理
选取以上品种的冬眠种藕,用水冲去污泥,然后将茎尖连叶鞘一起切下,用2%洗衣粉溶液轻轻刷净,自来水冲洗30ｍｉｎ后用纱布吸干,剥去外层叶鞘,置于超净工作台上。在75%酒精溶液中浸泡1ｍｉｎ,然后用0 1%升汞消毒10～12ｍｉｎ,消毒后无菌水冲4～5遍,再剥去内层叶鞘,接入培养基[4]。
1 3 培养基
试验中ＭＳ培养基为基本培养基,含琼脂5ｇ Ｌ,ｐＨ值5 8。在ＭＳ培养基中分别加入赤霉素ＧＡ0 2ｍｇ Ｌ和不同浓度的细胞分裂素ＢＡ(0 2～0 8ｍｇ Ｌ),培养一段时间后,观察不同激素水平对诱芽的影响。待幼叶长出后转入增殖培养基,在ＭＳ培养基中添加不同浓度的ＢＡ(0 2～1 0ｍｇ Ｌ)、ＧＡ(0～0 5ｍｇ Ｌ)和生长素ＩＢＡ(0～0 5ｍｇ Ｌ),观察不同激素水平对增殖的影响。在相同激素水平的情况下,用固体(加琼脂5ｇ Ｌ)和液体2种培养基进行增殖培养。若干天后,观察两者的增殖结果。将经增殖培养后带有茎段的小苗转入添加ＩＢＡ(0～1 8ｍｇ Ｌ)或生长素ＮＡＡ(0～1 4ｍｇ Ｌ)的生根培养基中,观察不同激素对生根的影响。培养室恒温为25℃,光照强度为2000ｌｘ,每天光照14ｈ。
1 4 移栽炼苗
将试管苗分别栽入营养液(Ｋ∶Ｎ∶Ｐ∶Ｍｇ∶Ｃａ=22∶13∶1∶1∶3)、黄沙、西湖淤泥(西湖淤泥∶泥炭∶基肥=8∶2∶2)等基质中,黄沙和西湖淤泥经高温灭菌,使用时加营养液呈稀糊状,调查试管苗的成活率。
2 结果与分析
2 1 不同激素水平对诱芽率的影响
经20ｄ培养后结果(表1)可见,各参试荷花品种芽的诱导率均以采用ＭＳ+ＢＡ0 4(ＢＡ0 4表示加入ＢＡ0 4ｍｇ Ｌ,下同)+ＧＡ0 2诱导培养基时最高。5个品种中,贵妃诱导率较低,仅10%～55%。而另4个品种,采用ＭＳ+ＢＡ0 4+ＧＡ0 2诱导培养基时,诱导率均在80%～90%。ＭＳ+ＢＡ0 2+ＧＡ0 2处理的诱导率虽然也比较高,但芽细小,叶柄细长,生长势弱。ＭＳ+ＢＡ0 8+ＧＡ0 2诱导培养基发出的芽比较粗壮,叶柄短,叶片卷曲、较厚,但诱导率较低,大约14ｄ以后有幼叶长出。试验结果可见,ＢＡ浓度高于0 4ｍｇ Ｌ,达到0 8ｍｇ Ｌ时,荷花的芽诱导受到了抑制,故诱导培养基以ＭＳ+ＢＡ0 4+ＧＡ0 2为好。
2 2 不同激素水平对增殖的影响
将已发芽并带幼叶的小苗转入不同激素、不同浓度的培养基中培养25ｄ后,发现厦门碗莲、白玉、佛手观音和佛座等4个品种的大多数小苗能发出1～3个新芽,部分小苗还能长出茎段,贵妃芽的增殖频率、芽的平均增殖系数和发出茎段的频率明显低于其它4个品种(表2,3,4)。
当在添加了ＢＡ0 8ｍｇ Ｌ的ＭＳ培养基中再添加ＧＡ0 5ｍｇ Ｌ或ＩＢＡ0 5ｍｇ Ｌ时,除贵妃外,其它4个品种的芽增殖频率均在70%～90%。但该2组处理的茎段增殖频率相差很大,添加ＧＡ0 5ｍｇ Ｌ的处理除贵妃外,均在55%以上;而添加ＩＢＡ0 5ｍｇ Ｌ的处理则都在0～10%。由此可见,ＢＡ无论和ＧＡ合用,还是和ＩＢＡ合用,芽的增殖频率相差不多,但ＧＡ可明显促进茎段的发生。试验结果还可以看出,随着ＢＡ浓度由低到高,芽的增殖频率也呈现由低到高的趋势。至ＢＡ0 8ｍｇ Ｌ时增殖率最高,而当ＢＡ浓度达到1 0ｍｇ Ｌ时,荷花茎段的发生则受到了抑制。从以上结果可见,荷花的增殖培养基以ＭＳ+ＢＡ0 8+ＧＡ0 5较合适。
2 3 固体和液体培养基对增殖的影响
用ＭＳ+ＢＡ0 8+ＧＡ0 5固体和液体2种培养基同时继代10ｄ,都能发出新芽。继代25ｄ后,两者的增殖频率差别不大(表5),液体培养基的平均增殖系数略低,但植株健壮,且不干枯;而固体培养基内会出现叶片及叶柄干枯的情况,且植株细弱。在实际操作中,两者交替使用,可达到好的效果。
2 4 不同激素水平对生根的影响
增殖培养25～30ｄ,将带有茎段的小苗转入生根培养基培养20ｄ后可见,不同激素水平的对荷花根的促生作用有很大区别(表6),个别小苗在第7ｄ有根长出,多数在20ｄ后长根。当ＩＢＡ浓度分别为0 6ｍｇ Ｌ、1 0ｍｇ Ｌ和1 4ｍｇ Ｌ时,生根率呈现从低到高的趋势;当ＩＢＡ浓度达到1 8ｍｇ Ｌ时,生根率下降。试验结果可见,添加ＮＡＡ各处理的生根率都很小。ＬＳＤ法测定结果显示,试验处理中,以ＭＳ+ＩＢＡ1 4的生根率最高,均在55%以上,最高可达83 3%。
2 5 试管苗的移栽
在移栽试验中我们发现,将已长根的小苗从瓶中轻轻移出后,须在自来水中放置2～3ｄ(每天换水),再植入备好的基质中,小苗栽植深度以2ｃｍ为宜,移栽14ｄ以后长出新根,30ｄ后发出新芽,此时,可逐渐提高水位。在营养液、黄沙及西湖淤泥等3种移栽基质中,黄沙和营养液荷花试管苗成活率分别为55 6%和45 5%,以西湖淤泥的成活率最高,达到72 7%。
3 小结与讨论
诱芽培养基以选用ＭＳ+ＢＡ0 4ｍｇ Ｌ+ＧＡ0 2ｍｇ Ｌ最为理想,既能获得较高的诱导率,又能保证荷花生长健壮。增殖培养时,在ＭＳ培养基中添加ＢＡ0 8ｍｇ Ｌ或ＢＡ1 0ｍｇ Ｌ与ＧＡ配合使用,能获得较高的增殖率,但连续继代2次以上,会出现畸型苗,如果和ＢＡ0 4ｍｇ Ｌ+ＧＡ0 2ｍｇ Ｌ交替使用,能最大程度地避免这种情况发生。与此同时,还应将固体培养基和液体培养基交替使用,这样才能得到多而健壮的小苗。在生根培养中,ＩＢＡ的促生根作用明显优于ＮＡＡ。当2种激素的浓度同为1 4ｍｇ Ｌ时,ＩＢＡ最高生根率能达到83 3%,而ＮＡＡ只有13 3%,所以,荷花生根培养用ＩＢＡ效果较好。厦门碗莲、白玉、佛手观音和佛座等4个品种,在整个离体培养过程中生长情况区别不大,只有贵妃的诱芽率、增殖率和生根率都较低,这说明不同品种材料的异质性,应考虑调整培养基的激素水平[5]。试管苗出瓶后,先要在自来水中放置2～3ｄ洗净培养基质,再移入经消毒过的西湖淤泥,成活率可达72 7%。
大岩桐组培快繁技术
大岩桐属苦苣苔科球根花卉，株高12厘米至25厘米，全株密布绒毛叶对生，花顶生或腋生，花冠阔钟形，花多呈白、粉、红、紫等色。花朵大，花色浓艳多彩，花期长，是深受人们喜爱的温室盆栽花卉。可用来装饰窗台、几案、会议室等。
大岩桐传统繁殖方法为播种法、扦插法、分球法等。大岩桐种子极小，每克种子有2．5万粒至3万粒，寿命较短，仅两个月左右。播种繁殖对土壤条件要求高，操作精细，且易发生性状变异、品种退化现象；扦插法虽可保持原品种特性，但繁殖系数较低，不能适应大批量生产的需要；分球法形成的植株又多具有株形不整齐的缺点，生产上亦不常用。基于以上原因，我们从1998年开始尝试用组培法繁殖大岩桐，基本上找到了适合大岩桐诱导、分化和生根的培养基配方和培养条件。
材料与方法供试材料为候毛大岩桐。剪取成年植株的幼叶，用流水冲洗半小时，在超净工作台上进行消毒处理。首先将经过消毒处理的植株幼叶放入75％酒精中浸泡30秒钟，之后用0．1％的氯化汞溶液处理5分钟至8分钟，最后用无菌水冲洗4次备用。以M S为基本培养基，附加蔗糖30克／千克、琼脂6克／千克及不同种类和浓度的激素，在PH值为5．8、温度为18℃至20℃条件下进行诱导、分化、生根培养。
诱导和分化将消毒后的幼叶切成0．4平方厘米至0．5平方厘米的方形小块，接种到附加2毫克／千克的6－BA、0．2毫克／千克的N AA的M S培养基上（苄氨基嘌呤BA为一种利于长的细胞分裂素，荼乙酸N AA为一种促进生根的生长素）在25℃愈伤组织，40天后少数愈伤组织上可分化出幼芽。
继代培养将愈伤组织块上分化出的幼芽切下，转入继代培养基上，继代培养基附加1毫克／千克的6－BA、0．1毫克／千克的N AA，培养温度为25℃，每天在1000LX至2000LX光强下连续光照12小时。一周后幼芽发育，并在基部形成大量芽体，一般一个月可长满培养基面，一个月应转移一次。
生根培养将继代培养中苗高达2厘米，有3片至4片完整叶片的小植株，转移到生根培养基上，生根培养基为1／2M S，附加1毫克／千克的I－BA（IBA为一种生长素）。培养条件与继代培养一致，2周后有根长出，可炼苗移栽。
炼苗与移栽影响大岩桐的移栽成活率的关键是控制好温度和湿度，大岩桐要求生长在高温、潮湿及半阴环境，通风不宜过分，要保持较高的空气湿度。移栽前先闭瓶炼苗1周，洗净根上附着的培养基，栽入装有蛭石的营养钵中，蛭石用0．5％的K M nO4消毒。搭塑料小拱棚保湿，棚上架遮荫网，保持棚内温度20℃至25℃，两周后逐渐揭开塑料薄膜，一个月后可定植上盆，常规培养5月至6月即可开花。
大岩桐组培快繁技术，比传统的播种法、扦插法、分球法繁殖系数高，植株整齐一致，由于是无性繁殖，其性状没有明显的分离。能保持原品种特色和降低繁殖成本。但继代培养过程中发现，同样是在1毫克／千克的6－BA条件下，有部分试管苗发生玻璃化，失去分化能力，而低于1毫克／千克的6－BA，分化数量明显减少，6－BA的适宜浓度有待进一步探讨。
山茶花扦插快繁技术
山茶花是我国十大传统名花之一，生长茂盛、四季常青，深受人们喜爱。它的繁殖方法有扦插、嫁接、组培和播种等方法，我们经过多年的反复比较试验，发现扦插繁殖技术路径相对简单、成本低廉、繁殖系数高，成苗率达到95%以上，适合于大规模生产中采用。现将其主要技术路径总结如下：
１ 扦插时间 在长沙地区以５～６月，８月下旬～９月中旬较为适宜， 10月～11月亦可扦插，但以５～６月扦插效果较好，50天左右即可生根，10月～11月扦插要120～150天才能生根，给管理带来很大困难，且成苗率相对较低。
２ 插穗准备 在采取枝条前的2～3天，应对枝条的母本植株进行消毒、杀菌，以防止采摘生病带菌的枝条。要选择组织健壮、发育良好、无病虫害、无枯枝黄叶、营养特别充足的当年生半木质化枝条作为插条。枝条过嫩或过老都不利于扦插生根，过嫩容易腐烂，过老又难以生根。采摘枝条最好在阴天或有露水的清晨进行，枝条采摘后要立即浸泡在清水中，放置阴凉处。
３ 插床准备 在大棚中建立插床，大棚使用遮阳网遮荫，给每个插床配置塑料小棚，床宽1.2～1.5m，扦插基质为粗河砂１份、细河沙２份和生黄土２份，均匀混合后，铺在插床上，厚度为20～25cm。扦插前要用高锰酸钾消毒。
４ 扦插方法 剪取带有２片功能叶的插穗，其功能叶最好剪除1/3～1/2，防止插穗体内水分散失过快。剪口要平滑，功能叶下带一个节，每根枝条宜剪取２～３个插穗。随即用含有500ppm的吲哚乙酸、0.3%的磷酸二氢钾的泥团涂蘸插穗基部，扦插时用小木棍打孔，孔深２cm左右，然后插入插穗，用手压实，株行距为３～５×10～12cm。
５ 插后管理 扦插结束后，立即将插床喷透水，所有生产用水宜用酸调节pｈ6.0左右（山茶花喜酸性环境）。大棚使用遮阳网遮荫，防止阳光直射，在插床内用塑料薄膜搭置小棚，以保持床内空气湿度，保持插条叶面湿润，当叶面干燥时用微喷设施喷水，还要保持基质湿润而不渍水。大棚内要早晚通风换气，当发现叶面有白霉点时，表明湿度过大，要立即给小棚通风，否则就会烂根。务必注意插床内的环境卫生，每周用杀菌剂消毒一次。大棚内温度宜保持在25～30℃左右，湿度保持在75%以上，约50天就开始生根，生根后要适当控水，控制湿度，增加光照，可以早晚揭开塑料小棚的两端，约15～20天后，发根比较完全时即可揭开小棚，同时可以喷施一些专用叶面肥１～２次，以利于生根长叶。30天以后，发出嫩芽，根长至3～4cm，即可移栽。
麝香百合组培快繁技术
百合是世界上著名的切花品种之一,靠常规的小鳞茎分株方法繁殖,繁殖系数较低,1株百合每年只能得到1～3个小鳞茎[1]。有些种类可用鳞片扦插繁殖,但往往容易腐烂。另外,百合长期靠营养繁殖,容易感染病毒病,而影响百合品质[2]。组织培养快速繁殖技术,能够迅速去除病毒和更新品种,具有较高的经济价值和开发潜力,因而得到广泛的应用。近年来,很多花卉研究者进行了百合的组织培养繁殖研究,所选的外植体有珠芽、幼茎段、叶片、鳞片等[3 6],主要侧重于不同外植体对百合成苗和脱毒效果的研究,而关于利用组培苗叶片基部进行快速繁殖和结鳞茎的研究,报道较少[7]。本试验以组培苗叶片基部为材料,对影响百合成苗和结鳞茎的两类主要激素进行了系统研究,省去了对外植体消毒处理的过程,减少了污染机率,为将来大规模生产百合小苗和鳞球茎在理论和实践上提供参考依据。
1 材料与方法
1.1 材料
采用的百合品种为麝香百合(Ｌｉｌｉｕｍｌｏｎｇｉ ｆｌｏｒｎｍＴｈｕｍｂ),英文名字为Ｅａｓｔｅｒｌｉｌｙ。
1.2 方法
取百合鳞片经消毒后,接种于ＭＳ培养基上,诱导丛芽体,丛芽体继代扩增后,剥取丛芽叶片基部进行处理。
1.2.1 6 ＢＡ和ＮＡＡ处理 以ＭＳ为基本培养基,设计系列浓度的6 ＢＡ和ＮＡＡ处理组合,6 ＢＡ(ｍｇ/Ｌ)为:0,0 5,1 0,2 0;ＮＡＡ(ｍｇ/Ｌ)为:0,0 1,0 2,0 4。共16个处理组合,代号分别为:Ｄ11、Ｄ12至Ｄ44。每个处理组合接种3瓶,每瓶接10个叶片基部,长度约为1ｃｍ。2个月后观察统计,生根率以长根植株占成苗植株的百分数进行统计;结鳞茎率以结鳞茎植株占成苗植株的百分数进行统计。
1.2.2 培养条件 百合适宜的培养温度为22～25℃,光照强度为1000～1500ｌｘ,每日光照10～16ｈ,相对湿度约为70%。
2 结果与分析
不同浓度激素组合对叶片成苗和结鳞茎的处理效果见表1。
2 1 成苗率
成苗率是指所出的苗数占接种的叶基部总数的百分数。随着6 ＢＡ浓度的加大,成苗率呈降低趋势。从4个浓度的6 ＢＡ看,不加6 ＢＡ的处理(Ｄ11、Ｄ12、Ｄ13、Ｄ14)成苗率最高,平均值为76 25%,说明6 ＢＡ对成苗有抑制作用。而适量的ＮＡＡ对成苗有一定的促进作用,在这16个处理中,以Ｄ12处理成苗率最高。
2 2 增殖系数
组培百合的基本目标之一是在短时间内大量繁殖小苗和球茎,所以提高增殖系数,可在短时间内获得更多的小苗或球茎。综合这16个处理,以Ｄ22和Ｄ43处理增殖系数最高,分别为:1 7和2 0;其次为Ｄ12、Ｄ24和Ｄ34,均为1 6。
2 3 结鳞茎率和鳞茎直径
结鳞茎率以不加6 ＢＡ的为最高,随6 ＢＡ浓度加大,结鳞茎率下降;鳞茎直径也有类似的结果。表明6 ＢＡ对结鳞茎率和鳞茎直径有抑制作用。
2 4 株高和生根率
株高随着6 ＢＡ浓度的加大而降低,从1 7ｃｍ降到0 6ｃｍ;生根率以不加6 ＢＡ的为最高,平均值为90 5%,加大6 ＢＡ浓度明显抑制百合生根。这说明ＮＡＡ对株高和生根的促进作用,随着6 ＢＡ浓度加大被抵消一部分或完全被抑制。
2 5 小苗的栽培和处理
对于苗高3～4ｃｍ的已生根带有鳞茎的小苗,可打开瓶口炼苗3～5ｄ,然后移入沙∶土(1∶1)的基质中,保持温度15～25℃,湿度70%以上,50%自然光照,可得到较高成活率。所用沙土最好是经过灭菌的,如果用未灭菌的沙土,小苗茎部容易受细菌和霉菌的侵染而腐烂,影响成活率;用高温灭菌的沙土混合物,小苗不容易得病,长势较未灭菌的健壮,且成活率较高。对处于芽苗阶段的小苗,可继代至ＭＳ+ＮＡＡ0 03ｍｇ/Ｌ的培养基中,促进其生长;对没有生根的小苗可继代至1/2ＭＳ+活性炭5%的生根培养基中,进行生根培养,然后再进行移栽。
3 小结与讨论
综合以上试验结果得出:6 ＢＡ主要有提高增殖系数的作用,但抑制结鳞茎和减小鳞茎直径,同时抑制植株长高和生根,这与赵祥云[5]的研究结果相似。ＮＡＡ有促进成苗、植株长高和生根的作用,但过多ＮＡＡ会使气生根增多,不利于小苗生长。从成苗和结鳞茎率角度看,本试验最优组合为Ｄ12;从提高增殖系数角度看,以Ｄ43最好;如果把成苗和提高增值系数结合起来,则Ｄ22最优。所以适当地调整6 ＢＡ和ＮＡＡ的浓度比,才能得到理想的结果。本试验对影响百合成苗和增殖的2种激素进行了初步研究,从中选出了利于成苗和增殖的最优组合。王爱勤[7]等认为糖的浓度对试管结鳞茎有影响,关于糖浓度及如何调控和增加其他一些激素使百合在试管内快速结鳞茎和增大鳞茎直径等技术,有待于进一步研究
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